Respuestas de 15
cultivares de Musa sp y 2 Heliconias sp frente a la inoculación de Ralstonia
solanacearum E.F. Smith, agente causal del Moko
Responses of 15 Musa sp
and 2 Heliconias sp
cultivars to the inoculation of Ralstonia
solanacearum E.F. Smith, causative agent of Moko
Artículo
resultado de proyecto de investigación financiado por
La Universidad Técnica Estatal de
Quevedo
Daniel Vera-Aviles
Master
Ciencias Agrarias, Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ) Quevedo
Ecuador
devera@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-7641-6876
Carmita Suarez-Capello
Master
Ciencias Agrarias, Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ) Quevedo
Ecuador
csuarez@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0003-1780-6513
Karla Veloz-Martinez
Master
Ciencias Agrarias, Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ) Quevedo
Ecuador
kveloz@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-4147-9586
Luis Simba-Ochoa
Master
Ciencias Agrarias, Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ) Quevedo
Ecuador
lsimba@uteq.edu.ec
https://orcid.org/0000-0003-2712-4081
http://centrosuragraria.com/index.php/revista
Publicada por: Instituto Edwards Deming
Quito - Ecuador
Octubre - Diciembre
vol. 1. Num. 7 2020
Pag. 33-46
Esta obra está bajo una Licencia Creative Commons
Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0
Internacional.
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/deed.es
RECIBIDO: 18 DE
NOVIEMBRE 2019
ACEPTADO: 29 DE MARZO 2020
PUBLICADO: 12 DE OCTUBRE 2020
RESUMEN
El
objetivo principal fue establecer la respuesta del comportamiento de 15
cultivares de Musa sp y 2 cultivares de Heliconia sp frente a la inoculación
del aislamiento de Moko (Ralstonia solanacearum) y específicamente determinar
el tipo de R. solanacearum que se presenta en la zona Litoral (biovar) y
definir los niveles de resistencia/tolerancia de los cultivares Musa sp contra
Moko (Ralstonia solanacearum). Esta enfermedad que, detectada por primera vez
en 1840, en la Guayana Británica y apareció en forma epidémica en Trinidad en
1895, en la actualidad se encuentra presente en varios países productores de
plátano de América, donde causa grandes pérdidas anuales. Este estudio se
dispuso en un diseño completamente al azar (DCA), 17 tratamientos (cultivares
de Musa y Heliconia) en tres repeticiones, donde cada unidad experimental
estuvo compuesta de 4 plántulas. El estudio de resistencia/tolerancia de los
cultivares Musa sp contra Moko en plátano (AAB)
banano AAA y Heliconias sp, permitió las variedades susceptibles el siguiente
material vegetal (Hartón, Curare, Limeño, Barraganete, Guineo de jardín y el
Gross Michel) las cuales llegaron a la etapa de muerte en menos de 17 y 25 días
difiriendo de las variedades que se requiriera mayor tiempo para la presencia
de la sintomatología (Maqueño morado, Maqueño verde, Orito, Vinces y las
Heliconias).
Palabras clave: Musas, Heliconias, Ralstonia
solanacearum, biovar, resistencia
ABSTRACT
The main
objective was to establish the behavior of 15 cultivars of Musa sp and 2
cultivars of Heliconia sp against challenge insulation Moko (Ralstonia
solanacearum) and specifically determine the type of R. solanacearum that
occurs in the Littoral zone. (Biovar), and
define levels of resistance/tolerance of cultivars Musa sp
against Moko (Ralstonia
solanacearum). To achieve the study of this disease was first detected in 1840
in British Guiana and appeared in epidemic form in Trinidad in 1895, today it
is present in several producing countries banana America, where it causes big
annual losses he set a completely randomized design (CRD), 15 treatments
(cultivars of Musa and Heliconia) in three repetitions, each experimental unit
was composed of 4 seedlings. The study results resistance/tolerance of the
cultivars Musa sp against Moko
(Ralstonia solanacearum) on plantain (AAB) banana and
Heliconia sp (AAA) 17 varieties which the next plant
matter (Harton, Curare, Limeño,
are susceptible evaluated Barraganete, Guineo jardin and Gross Michel)
reached this tage of death within 17 to 25 day sof differing varieties is more time to the presence of
symptoms Maqueño purple, Maqueño
green, Orito, Vinces and
Heliconia.
Key words: Musa, Heliconia, Ralstonia
solanacearum, biovar, resistance
INTRODUCCIÓN
La región de América Latina y el Caribe
(ALC) representa el 66% de las exportaciones mundiales de Cavendish (Musa AAA).
Ecuador es el mayor exportador mundial de bananos Cavendish, con 6.5 millones
de toneladas exportadas en 2018. Filipinas y Costa Rica son el segundo y tercer
exportador, con 3.4 y 1.8 millones de toneladas, respectivamente (FAO, 2019).
Además, ALC también es un exportador clave de plátanos, con el 72% de los
plátanos comercializados en los mercados internacionales. Sin embargo, el 62%
de la producción de banano y plátano en ALC (20 millones de toneladas) se
consume localmente, lo que indica su gran importancia en las dietas y la
seguridad alimentaria en toda la región (FAO, 2019). Ecuador ocupa el segundo
lugar de países exportadores de plátano, abasteciendo el 17% de las
importaciones de la fruta a nivel mundial; El plátano, representa un importante
sostén para la socio-economía y seguridad alimentaria del país, el cual genera
fuentes estables y transitorias de trabajo (PROECUADOR, 2015), además de
proveer permanentemente alimentos ricos en energía a la mayoría de la población
campesina. Actualmente se reportan en el país un total de 135 152 ha de
plátano, de las cuales 84 101 ha están bajo el sistema de monocultivo y 51 051
ha se encuentran asociadas con otros cultivos (INEC, 2014). La mayor zona de
producción de esta musácea es la conocida como el triángulo platanero, la cual
abarca las provincias de Manabí, Santo Domingo y Los Ríos con 52 612, 14 249 y
13 376 has, donde se produce variedades como el Dominico, que se lo destina
principalmente para el consumo nacional y la variedad Barraganete se lo destina
en su mayor parte a la exportación, se estima que anualmente se exportan
alrededor de 90 000 t de esta variedad, de acuerdo a estadísticas de comercio
exterior de TRADEMAP.
El Moko del plátano y el banano es
causado por la bacteria Ralstonia solanacearum (Smith), Yabuuchi, et
al., 1995). Es uno de los patógenos bacterianos más devastadores en
cultivos de plátano y banano debido a su persistencia en campo, a una amplia
gama de hospederos que pueden trasmitir la enfermedad, se disemina por suelos
contaminados y pueden afectar además otros cultivos reduciendo su rendimiento. En
nuestro país existe la enfermedad del Moko desde los años 70 (Intriago, 1988).
Habiendo permanecido restringida a la región amazónica hasta su aparición en la
región platanera al occidente de los Andes. A partir de su detección en la
región Litoral del país, en la provincia de Manabí (Delgado, Morillo, Buitrón,
Bustamante y Sotomayor. 2014), esta enfermedad se ha constituido en una amenaza
para los productores, exportadores y demás involucrados en la cadena
productiva. Si bien el productor enfrenta una serie de problemas fitosanitarios
presentes en su cultivo, tiene suficiente conocimiento para manejar niveles de
infección mediante procedimientos que no afectan demasiado su economía, La presencia de esta bacteria en el Litoral,
ecuatoriano se convierte en una nueva amenaza a la producción de Musa
para la que el productor debe prepararse, lamentablemente se cuenta con
relativamente escasos medios de lucha eficaz contra esta bacteria por lo que
toda medida tendiente a restringir su diseminación durante el mayor tiempo
posible sería la mejor estrategia para los productores
La infección inicial de la planta se
presenta cuando R. solanacearum invade los tejidos vasculares a través
de las raíces con heridas o aperturas naturales originadas por la emergencia de
raíces secundarias. Una vez ha ingresado en estos tejidos R. solanacearum
encuentra un medio óptimo para su diseminación, invadiendo rápidamente el
xilema y células adyacentes debido a que estas estructuras celulares cumplen la
función de transporte de agua en forma ascendente y lateral hacia otros tejidos
(Hernández, Mariño, Trujillo & de Navarro, 2005).
El manejo de plagas agresivas y cuarentenaria como es el Moko,
especialmente a nivel de pequeños y medianos productores, requiere la
aplicación de todas las posibilidades de control que se pueda disponer para
minimizar su impacto. Una de estas
tácticas seria el establecimiento de mezcla de cultivares de musáceas con algún
grado de resistencia al patógeno que contribuyan a reducir el potencial de
multiplicación de la bacteria dentro de la plantación. dado que el movimiento de inóculo desde una
planta susceptible a otra, se ve obstaculizado por la presencia de plantas
resistentes como han demostrado recientes estudios en diferentes patosistemas (Castilla et.
al., 2003; Jarvis et al., 2012; Mulumba et al., 2012;). El objetivo de este estudio fue,
establecer el grado de susceptibilidad o resistencia de cultivares de Musa sp
y especies ornamentales de géneros relacionados como Heliconia sp. que
pudieran ser incorporados en una estrategia de manejo de esta bacteriosis.
MATERIALES
Y MÉTODOS
Localización de la investigación
La investigación a nivel de laboratorio e invernadero se lo realizo en
el campus de la Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ), ubicada en el km
1,5 de la carretera Quevedo - Santo Domingo de Los Tsáchilas, con una altitud
de 120 msnm, temperatura media 25 ºC, humedad relativa de 84 %, precipitación
2100 mm año-1 y heliofania 919 hora luz año.
El factor a estudiar es la respuesta de 8 cultivares de plátano, 7 de
banano y 2 Heliconias (Tabla 1) a la inoculación con la bacteria R.
solanacearum. Cada cultivar constituyó un tratamiento.
Tabla 1. Caracterización y tipo genético de los cultivares.
|
Nº |
Cultivar |
Genoma |
Grupo |
|
1 |
Vinces |
AAB |
Banano |
|
2 |
Barraganete |
AAB |
Plátano |
|
3 |
Williams
|
AAA |
Banano |
|
4 |
Dominico Verde |
AAB |
Plátano |
|
5 |
Dominico
negro |
AAB |
Plátano |
|
6 |
Maqueño verde |
AAB |
Plátano |
|
7 |
Orito |
AAA |
Banano |
|
8 |
Limeño |
AAB |
Plátano |
|
9 |
Cavendish
|
AAA |
Banano |
|
10 |
Gros Michel |
AAA |
Banano |
|
11 |
Curare |
AAB |
Plátano |
|
12 |
Maqueño morado |
AAB |
Plátano |
|
13 |
Hartón |
AAB |
Plátano |
|
14 |
Guineo de jardín |
AAA |
Banano |
|
15 |
Filipino |
AAA |
Banano |
|
16 |
Heliconia Latispatha* |
|
Sin fruto |
|
17 |
Heliconia
Wagneriana* |
|
Sin fruto |
Se consideraron solamente estas dos especies en función de que son
muy frecuentes en sistemas de producción con Musa sp, especialmente plátano y orito.
Obtención y manejo del material vegetal
Los requerimientos comerciales y culinarios de las musáceas han
conducido al productor a mantener prácticamente monocultivo de unas pocos
cultivares tanto en banano como en plátano.
Sin embargo, existe una cantidad de cultivares, sobre todo del tipo plátano
en las fincas de pequeños productores, de los que la Universidad Técnica
Estatal de Quevedo (UTEQ) en la finca del campus experimental La María.,
mantiene una colección de aquellas que tienen cierta preferencia entre los
productores y que sirvió de base para este estudio. En esta colección, se seleccionaron
hijuelos de aproximadamente 30 cm de altura y 250 – 300 g de peso. Se limpiaron completamente de residuos y
tierra vegetal y se desinfectaron sumergiéndolos en una suspensión de Vitavax
(15 g/20 L de agua) por 5 minutos. A continuación,
se colocaron en fundas plásticas negras de 20 x 10 cm rellenas con suelo
superficial de la misma finca y que se había dejado solarizar previamente. A las dos semanas, se añadió 5 g de
fertilizante completo (10 ̵ 30 ̵ 10). Las plantas se mantuvieron en el
invernadero del laboratorio de microbiología de la UTEQ en el campus principal,
manteniendo un plástico bajo las macetas para recolectar cualquier lixiviado y
desinfectarlo apropiadamente antes de desechar.
Origen y preparación de inoculo de R.
solanacearum E.F. Smith
Para obtener colonias de la bacteria R. solanacearum se
visitó el lugar de cuarentena donde se han detectado plantas con la enfermedad
del Moko en el cantón El Carmen con todas las precauciones pertinentes
(aislamiento y desinfección de zapatos y herramientas)
Se colectaron muestras de pseudotallo y
cormo de plantas que presentaban síntoma de marchitez en fincas productoras de
plátano de la provincia de Manabí, cantón El Carmen en una finca con registro
de la presencia de la enfermedad. Para la recolección de muestras se utilizaron
los protocolos establecidos en el plan de acción para el control de R.
solanacearum Raza 2 plaga que hasta ese momento era de tipo cuarentenaria
para la región. (AGROCALIDAD, 2016). Las muestras colectadas se guardaron en un
recipiente hermético debidamente rotuladas y trasladadas al laboratorio. Seguidamente,
se procedió a obtener colonias puras por los siguientes procedimientos:
(a) Fragmentos de la sección del pseudotallo infectado se desinfectaron
con una solución de cloro al 1% y se enjuagaron en tres pases de agua destilada
estéril. Cuatro fragmentos (0,5 cm) de tejido de la parte interna de las
muestras, se colocaron en cajas petri conteniendo agar nutriente. Transcurriendo las 24 horas, de aquellas
muestras que dieron lugar a crecimiento bacteriano similares a R.
solanacearum, se transfirieron a placas de Agar nutriente.
(b) Fragmentos del pseudotallo con síntomas de pudrición se maceraron
en una caja Petri, alícuotas del macerado se usaron para estriar en placa de
agar nutritivo.
(c) Se realizó un corte transversal de un hijuelo que tenía la hoja
“bandera” muerta obteniéndose un exudado bacteriano, que se usó directamente
para hacer un estriado en placa de agar.
De las colonias obtenidas, se seleccionaron aquellas cuyo desarrollo presentaba
las características morfológicas de R. solanacearum: colonias mucosas
con centro rojizo que aparecieron antes de los tres días de incubación y
mostraban pequeñas espirales de un halo rojo brillante (Kelman A, 1954), para transferirlas a nuevas placas y conseguir crecimientos puros. Estas colonias se usaron en las pruebas
siguientes. Con el fin de asegurar identificación, se realizaron las pruebas de
caracterización bioquímica de la bacteria consideraron características,
morfológicas fisiológicas, químicas y patológicas, siguiendo procedimientos
estandarizados (Denny, 2001).
Una vez verificadas la identificación y características de la colonia,
se multiplicó en el mismo medio de agar nutriente para preparar inoculo. Usando
colonias de 48 horas de edad, se preparó una suspensión de la bacteria con agua
destilada estéril para obtener una concentración de 2,5 x 105 ufc (unidades formadoras de
colonias). Esta suspensión se usó para
inocular las plántulas.
Inoculación
A los 70 días de edad cuando las plantas tenían entre cuatro y cinco
hojas se procedió a inocularlas, bajo condiciones controladas de aislamiento, en
el umbráculo. En este caso, se usó 2 ml
de la suspensión de R. solanacearum y se inyecto en el pseudotallo de
las plantas. Previamente, luego de
probar diferentes agujas, se seleccionó una jeringuilla de 10 cm, equipada con
una aguja hipodérmica de 3 cm, para inyectar el inoculo en la base del
pseudotallo de las plántulas (Figura 1). Las plántulas se mantuvieron en
incubación en el mismo umbráculo.
Figura 1. Inoculación de las plántulas
de Musa sp en la base del pseudotallo
Diseño experimental y análisis estadístico
Para el experimento se usó un diseño completamente al azar, con cuatro
repeticiones por tratamiento; cada tratamiento contó con un testigo negativo
(agua desionizada estéril). Las plantas inoculadas se agruparon por tratamientos,
separados por una barrera de polietileno para evitar contaminación entre las cepas
de la bacteria. Los diferentes genotipos se evaluaron durante dos meses. Las
variables se analizaron mediante estadística descriptiva usando Windows Excel y
el programa estadístico R Commander, 2010. Para medir las variables se consideró
tres plantas de cada tratamiento; los síntomas externos se observaron
semanalmente de acuerdo a la escala propuesta por Oliveira et al., 2000,
las variables fueron los diferentes estadios de avance de la infección:
(Estadio 0) sin síntomas; (Estadío 1) flacidez de la hoja bandera, (Estadío 2) amarillamiento
de la plantilla; (Estadío 3) clorosis de la segunda y tercera hoja, (Estadío 4)
curvatura del peciolo y (Estadío 5) muerte de la planta. Las plantas sin
síntomas ocho semanas después de la inoculación se pueden considerar
resistentes, según los síntomas y el período de evolución de la enfermedad se
proponen los diferentes niveles de resistencia a la enfermedad del Moko, por
parte de los cultivares evaluados.
RESULTADOS
En las regiones donde se cultivan el banano, plátano se han convertido
en monocultivos de un solo tipo de material y su producción es continua a lo
largo del año. Consecuentemente, el
riesgo de que un patógeno selectivo por su especificidad, altamente virulento y
de fácil diseminación, es muy alto para el productor. La reciente introducción de R.
solanacearum a la zona platanera en El Carmen (Provincia de Manabí)
enfrenta a toda la cadena productora de esta musácea a la grave amenaza de esta
enfermedad y se deberán implementar todas las tácticas de control de que se
disponga para reducir su impacto.
La bacteria fue fácilmente aislada de las muestras de tejido en plátano
colectadas en la plantación donde fue reportada inicialmente. Su crecimiento in
vitro, así como las pruebas bioquímicas evaluadas relacionan a las cepas
aisladas con el grupo de R. solanacearum, confirmando que estas pruebas
son una herramienta simple efectiva para la selección y clasificación de este
grupo de bacterias igual a lo presentado por (Obregón, Rodríguez, &
Salazar, 2008).
De todas las muestras de tejido colectadas se pudo aislar colonias
bacterianas blanco mate o blanco con centro rojizo cuyas características
corresponden a la descripción de R. Solanacearum (Denny TP, 2001). La fuente de donde más fácilmente se pudo
aislar fue del exudado bacteriano del pseudotallo, de donde se obtuvieron
aislamientos con muy poca contaminación que sirvieron para las pruebas
subsiguientes.
Patogenicidad
Esta prueba se realizó al inocular los cultivares de Musa y Heliconias para
observar su reacción a la bacteria. Para
la inoculación se seleccionó el aislamiento MM1 cuyas características
coincidían en su totalidad con lo que indica la literatura para R. Solanacearum
de Musa sp. Los resultados de la inoculación fueron positivos
en todos los casos como se reseña más adelante. Una vez evaluada la reacción de
las plantas a la inoculación bacteriana, de cada cultivar se realizaron aislamientos
en agar nutriente para recuperar la bacteria y realizar las pruebas de
verificación: tinción de Gram, reacción de viscosidad y pectinolisis. Las características de todas las colonias
recuperadas corresponden a la misma con que se inocularon las plantas.
Las pruebas de patogenicidad indicaron que las cepas obtenidas presentaron
capacidad patogénica en plantas de banano y plátano igual a los presentado por
Obregón, et al., (2008), sus síntomas
observados en las plantas inoculadas fueron los característicos de la infección
por R. solanacearum
en musáceas, indicando que estas pruebas son una herramienta más para la
selección y clasificación de este grupo de bacterias.
Resistencia/tolerancia de los cultivares Musa sp y Heliconia al Moko
(R. solanacearum) del plátano y
banano en función de los síntomas presentes en los cultivares.
La Figura 4 muestra la respuesta de los ocho cultivares del grupo plátano
(Barraganete, Curare, Dominico negro, Dominico verde, Hartón, Limeño, Maqueño
morado y Maqueño verde) a la inoculación con R. solanacearum.
En este grupo AAB, cuatro (Hartón, Curare, Limeño y Barraganete) llegaron a
la etapa de muerte en menos de 25 días. Si bien todos presentaron un período de
incubación similar (8-12 días), el Barraganete se mostró más susceptible, pues 8
días después de la inoculación ya presentó los síntomas iniciales y diez días
más tarde todas las plantas estaban muertas.
Los demás cultivares (Limeño, Curaré y Hartón) llegaron a la etapa final
de muerte, a los 21, 24 y 32 días respectivamente.
Los otros cuatro cultivares del grupo, dos maqueños y dos dominicos, solo llegaron
hasta el estadio 3, con 2 a 3 de hojas marchitas entre los 20 y 30 días,
permaneciendo en ese estadío
hasta el fin del experimento. En este
grupo se destaca el maqueño morado con un período de infección de 21 días y
luego de 10 días más, los síntomas avanzan hasta presencia de 2-3 hojas cloróticas
(estadío 3), donde
permaneció hasta el fin del experimento.
Figura 4. Evolución de la
infección en días, por R. Solanacearum en
cultivares del grupo plátano (DFH) Días a la flacidez de hoja, (ATPH) Amarillamiento tenue de la primera hoja, (2-3HC) 2-3 Hojas
cloróticas, (ATP) Amarillamiento total de la planta,
(MP) Muerte de planta.
La Figura 5, muestra el grupo de los bananos (Cavenish,
Filipino, Gros Michel, Guineo jardín, Orito, Vinces y Williams). En este grupo, el Guineo de jardín y el
Gros Michel se presentan como muy susceptibles, pues presentaron un periodo de
incubación (días después de la inoculación a flacidez de las hojas-) bastante
corto (10 y 12 días) y en un periodo igual atravesaron toda la gama de síntomas
hasta llegar a la muerte de las plantas.
En el extremo opuesto se ubicó el cultivar Vinces,
cuyo periodo de incubación fue el más largo, 22 días; luego la enfermedad
evolucionó hasta el tercer estadio (2, 3 hojas cloróticas) donde permaneció
hasta el término de la evaluación presente estudio (50 días).
Los cultivares “Cavendish”, Orito y Williams tuvieron un comportamiento
similar al Vinces, pues, aunque tuvieron un avance ligeramente
más rápido de la enfermedad, ésta solo llegó al tercer estadio. Dentro de este grupo, también se ubicó el Filipino, aunque en este caso la enfermedad avanzó al
estadio 4, con amarillamiento total de la planta a
los 38 días de la inoculación. Resultados presentados por Silva, et al., (2000)
indicaron que los genotipos triploides (AAA)
Cavendish Giant, Cavendish William, Primitivo y
Guineo fueron susceptibles a las cinco cepas de R. solanacearum; todos los demás
cultivares mostraron reacción diferencial a estas cepas. En relación con la
resistencia de los genotipos de banano al Moko se
conoce que varios genes recesivos deben estar involucrados en su
comportamiento, ya que algunos de los cultivares de banano han mostrado
diferentes niveles de susceptibilidad a R.
solanacearum. (Valencia, Álvarez y Castaño, 2014)
Figura 5. Evolución de la
infección en días, por R. Solanacearum en cultivares del grupo banano (DFH) Días a la
flacidez de hoja, (ATPH) Amarillamiento tenue de la
primera hoja, (2-3HC) 2-3 Hojas cloróticas, (ATP) Amarillamiento
total de la planta, (MP) Muerte de planta.
Entre las dos variedades de Heliconia
evaluadas en este estudio, también se presentaron los dos tipos de reacción:
por un lado, la variedad H. wagneriana
presentó un período de incubación corto, (10 días) y se apreció una evolución
sostenida creciente a medida que pasaban los días y a los 20 días desde la
inoculación las plantas colapsaron por muerte celular. Por el contrario, H. latispata presentó síntomas iniciales
de reacción a la inoculación apenas a los 17 días, los que progresaron al
segundo estadio con síntomas de amarillamiento en la
primera hoja; de ahí en adelante no se observó la enfermedad (Figura 6).
Figura 6. Evolución de la
infección en días, causados por R. Solanacearum
en cultivares de Heliconia sp (DFH) Días a la
flacidez de hoja, (ATPH) Amarillamiento tenue de la
primera hoja, (2-3HC) 2-3 Hojas cloróticas, (ATP) Amarillamiento
total de la planta, (MP) Muerte de planta.
CONCLUSIONES
En la Tabla 3 se resume la respuesta de todos
los cultivares a la inoculación de R. solanacearum en base a la cual se proponen los niveles
de resistencia/susceptibilidad a tenerse en consideración para el manejo de la
enfermedad. El lapso que demoró la bacteria en matar a la totalidad de las
plantas de Gross Michel y Barraganete y H. wagneriana fue establecido como
criterio para establecer los niveles de susceptibilidad de los cultivares
evaluados. Estos tres cultivares se consideraron como muy susceptibles. Bajo este criterio, en el grado opuesto de la
escala tenemos a H. latispata
como muy resistente, pues apenas llegó a presentar el primer síntoma, indicando
reacción positiva a la inoculación, pero sin que la enfermedad progrese. El cultivar Filipino
se ubica más del lado de los susceptibles, aunque se hace una distinción
(medianamente susceptible) considerando que ninguna planta se murió en el
período del ensayo. Seguidamente se
presenta un grupo de cultivares integrados por los dos Maqueños, los dos Dominicos
del grupo de los plátanos; el Vinces, Orito,
Cavendish y Williams cuya reacción a la enfermedad llegó solamente al nivel de
presentar clorosis en la segunda y tercera hoja por lo que se ubican en la
categoría de tolerantes o medianamente resistentes. En relación con el Moko, de Oliveira et al. (2000) afirmaron que no se ha
detectado resistencia a la enfermedad en las variedades comerciales triploides y tetraploides de Musa sp.; sin
embargo, los resultados en este estudio demuestran una clara respuesta
diferencial a la enfermedad, entre los genotipos diploides (AA) de banano
capaces de expresar resistencia a R. solanacearum raza 2; constituyéndose en una posibilidad
a tenerse en cuenta para introducir diversidad a los triploides.
Tomekpé, Christophe & Escalant (2004), afirmaron que los diploides son muy
fértiles y contienen una considerable diversidad genética y pueden ser
silvestres, semisilvestres o partenocárpicos,
presentando frecuentemente una o más fuentes de resistencia y de tolerancia a
enfermedades y plagas, así como a diversas cualidades organolépticas. Esta
investigación ha logrado identificar varios cultivares de Musa con algún nivel
de resistencia a la bacteria entre los que se cuenta el cultivar Williams, que
es la base de la actividad bananera del país.
Por otro lado, deja en evidencia la alta susceptibilidad del plátano
barraganete, lo que torna urgente tomar medidas que contengan el avance de esta
devastadora enfermedad.
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